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AF594 酪胺 货号11082-AAT Bioquest荧光染料

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上海金畔生物科技有限公司代理AAT Bioquest荧光染料全线产品，欢迎访问AAT Bioquest荧光染料官网了解更多信息。

AF594 酪胺

AF594 酪胺

货号 11082 存储条件 在零下15度以下保存, 避免光照
规格 200 slides 价格 2604
Ex (nm) 590 Em (nm) 618
分子量 841.95 溶剂 DMSO
产品详细介绍

简要概述

AF594 酪胺是美国AAT Bioquest生产的荧光探针，对于许多免疫组织化学（IHC）应用，传统的酶促扩增程序足以实现足够的抗原检测。但是，有几个因素限制了这些程序的敏感性和实用性。事实证明，酪胺信号放大（TSA）是一种特别通用且功能强大的酶扩增技术，具有更高的检测灵敏度。TSA基于HRP在低浓度过氧化氢存在下将含有标记酪胺的底物转化为氧化的高反应性自由基的能力，该自由基可与HRP处或附近的酪氨酸残基共价结合。为了实现最大IHC检测，酪胺用荧光团预标记。每个过氧化物酶标记物的多个酪胺底物转换所赋予的信号放大转化了对低丰度靶标的超灵敏检测以及使用较少量的抗体和杂交探针。在免疫组织化学应用中，源自TSA方法的灵敏度增强允许增加一级抗体稀释以减少非特异性背景信号，并且可以克服由次优固定程序或低水平靶表达引起的弱免疫标记。AF594酪胺含有明亮的AlexaFluor®594，可以使用标准FITC滤波片组轻松检测（AlexaFluor®是ThermoFisher的商标）。金畔生物是AAT Bioquest的中国代理商，为您提供最优质的AF594 酪胺。

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适用仪器

荧光显微镜  
激发： Cy3/TRITC滤波片组
发射： Cy3/TRITC滤波片组
推荐孔板： 黑色透明
滤波片： Cy3/TRITC滤波片组

产品说明书

样品实验方案

简要概述

  1. 修复/透化细胞或组织
  2. 在封闭缓冲液中添加一抗
  3. 加入结合HRP的二抗
  4. 准备Styramide工作溶液，并在室温下添加到细胞或组织中（5-10分钟）

 

溶液配制

储备溶液配制

酪胺储备溶液（200X）：向小瓶中加入100 µL DMSO，并充分混合。 注意：未使用的酪胺储备溶液可在2-8℃下储存。

 

工作溶液配制

酪胺工作溶液（1X）：将100µL的酪胺储备溶液添加到包含0.003％H2O2的20 mL缓冲液中。注意：可以使用pH = 7.4的Tris Buffer以获得最佳性能。 注意：应立即使用酪胺工作溶液。 注意：20 mL溶液适合200次测试。

 

实验步骤

（该步骤适用于细胞或组织染色）

细胞固定和透化

1.在室温下用3.7％甲醛或低聚甲醛的PBS固定细胞或组织20分钟。

2.用PBS冲洗细胞或组织两次。

3.在室温下用0.1％Triton X-100溶液透化细胞1-5分钟。

4.用PBS冲洗细胞或组织两次。

 

组织固定，脱石蜡和补液

（根据标准IHC方案对组织进行脱蜡和脱水处理。根据实验方案使用特定溶液进行抗原修复。）

 

过氧化物酶标记

1.可选：通过在过氧化物酶淬灭溶液（例如3％过氧化氢）中孵育细胞或组织样品10分钟来淬灭内源性过氧化物酶活性，然后在室温下用PBS冲洗两次。

2.可选：如果使用结合HRP的链霉亲和素，建议通过生物素封闭缓冲液封闭内源性生物素。

3.在4°C下用封闭溶液（例如含1％BSA的PBS）封闭30分钟。

4.除去封闭溶液，并添加稀释好的一抗，在室温下放置60分钟或在4°C下放置过夜。

5.用PBS洗涤3次，每次5分钟。

6.将100 µL二级抗体-HRP工作溶液添加到每个样品中，并在室温下孵育60分钟。注意：孵育时间和浓度可以根据信号强度而变化。

7.用PBS洗涤3次，每次5分钟。

 

Styramide标记

1.向每个样品中添加100 µL Styramide 工作溶液，并在室温下孵育5-10分钟。 注意：如果您观察到非特异性信号，则可以缩短Styramide的孵育时间。您应该在不同的孵育时间点使用阳性和阴性对照确定样品的最佳孵育时间，或者您可以在工作溶液中使用较低浓度的Styramide。

2.用PBS冲洗3次。

 

复染和荧光成像

1.根据需要对细胞或组织样本进行复染。AAT提供了一系列核复染色试剂，如表1所示。请按照试剂附带的说明进行操作。

2.加上盖玻片。

3.使用适当的滤波器观察Styramide的荧光信号。

表1.建议用于核复染色的产品。 

货号 产品名称 Ex/Em(nm)
17548 核蓝 DCS1 350/461
17550 核绿 DCS1 503/526
17551 核橙 DCS1 528/576
17552 核红 DCS1 642/660

  

参考文献

Enhanced detection of Porcine reproductive and respiratory syndrome virus in fixed tissues by in situ hybridization following tyramide signal amplification
Authors: Trang NT, Hirai T, Ngan PH, Lan NT, Fuke N, Toyama K, Yamamoto T, Yamaguchi R.
Journal: J Vet Diagn Invest (2015): 326

Tyramide Signal Amplification for Immunofluorescent Enhancement
Authors: Faget L, Hnasko TS.
Journal: Methods Mol Biol (2015): 161

KSHV cell attachment sites revealed by ultra sensitive tyramide signal amplification (TSA) localize to membrane microdomains that are up-regulated on mitotic cells
Authors: Garrigues HJ, Rubinchikova YE, Rose TM.
Journal: Virology (2014): 75

Multiplexed immunohistochemistry, imaging, and quantitation: a review, with an assessment of Tyramide signal amplification, multispectral imaging and multiplex analysis
Authors: Stack EC, Wang C, Roman KA, Hoyt CC.
Journal: Methods (2014): 46

Rapid and sensitive detection of Escherichia coli O157:H7 in milk and ground beef using magnetic bead-based immunoassay coupled with tyramide signal amplification
Authors: Aydin M, Herzig GP, Jeong KC, Dunigan S, Shah P, Ahn S.
Journal: J Food Prot (2014): 100

Sensitive whole-mount fluorescent in situ hybridization in zebrafish using enhanced tyramide signal amplification
Authors: Lauter G, Soll I, Hauptmann G.
Journal: Methods Mol Biol (2014): 175

Characterization of GABAergic neurons in the mouse lateral septum: a double fluorescence in situ hybridization and immunohistochemical study using tyramide signal amplification
Authors: Zhao C, Eisinger B, Gammie SC.
Journal: PLoS One (2013): e73750

Quantification of alpha-tubulin isotypes by sandwich ELISA with signal amplification through biotinyl-tyramide or immuno-PCR
Authors: Draberova E, Stegurova L, Sulimenko V, Hajkova Z, Draber P.
Journal: J Immunol Methods (2013): 63

Development of a near-infrared fluorescence ELISA method using tyramide signal amplification
Authors: Gong H, Cradduck M, Cheung L, Olive DM.
Journal: Anal Biochem (2012): 27

Integrated tyramide and polymerization-assisted signal amplification for a highly-sensitive immunoassay
Authors: Yuan L, Xu L, Liu S.
Journal: Anal Chem (2012): 10737

说明书
AF594 酪胺.pdf

iFluor 555 酪胺 货号45105-AAT Bioquest荧光染料

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iFluor 555 酪胺

iFluor 555 酪胺

货号 45105 存储条件 在零下15度以下保存, 避免光照
规格 200 Slides 价格 3924
Ex (nm) 557 Em (nm) 570
分子量 1046.41 溶剂 DMSO
产品详细介绍

简要概述

对于许多免疫组织化学（IHC）应用，传统的酶促扩增程序足以实现足够的抗原检测。但是，有几个因素限制了这些过程的敏感性和实用性。乙酰胺信号放大（TSA）已被证明是一种特别通用且功能强大的酶放大技术，具有很高的测定灵敏度。 TSA拥有HRP在低浓度过氧化氢的存在下将标记的含酪胺底物转化为可与HRP或附近的酪氨酸残基共价结合氧化的高反应性自由基的能力。为了实现最大程度的IHC检测，酪胺预先标记有荧光团，使用少量的抗体和杂交探针通过每个过氧化物酶标记的多个酪胺底物的更新而产生信号放大并转化为低丰度靶标的超灵敏检测。在免疫组织化学应用中，源自TSA方法的敏感性增强可以提高一抗稀释度，以减少非特异性背景信号，并且可以克服由于固定步骤或目标表达水平低而导致的免疫标记弱的问题。 iFluor 555酪胺包含明亮的iFluor 555，可使用标准Cy3滤波片组轻松检测到。它是AlexaFluor®555酪胺（AlexaFluor®是ThermoFisher的商标）或其他光谱相似的荧光酪胺缀合物或TSA试剂（例如Cy3酪胺）的绝佳替代品。金畔生物是AAT Bioquest的中国代理商，为您提供最优质的iFluor 555 酪胺。

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适用仪器

荧光显微镜  
激发： Cy3/TRITC滤波片组
发射： Cy3/TRITC滤波片组
推荐孔板： 黑色透明
滤波片： Cy3/TRITC滤波片组

产品说明书

样品实验方案

简要概述

  1. 修复/透化细胞或组织
  2. 在封闭缓冲液中添加一抗
  3. 加入结合HRP的二抗
  4. 准备酪胺工作溶液，并在室温下添加到细胞或组织中（5-10分钟）

 

溶液配制

储备溶液配制

酪胺储备溶液（200X）：
将100 µL DMSO加入小瓶中并充分混合。注意：未使用的酪胺储备溶液可在2-8℃下储存。

 

工作溶液配制

酪胺工作溶液（1X）：
将100 µL酪胺储备溶液添加到20 mL含有0.003％H2O2的缓冲液中。 注意：可以使用pH = 7.4的Tris Buffer以获得最佳性能。注意：应立即使用Tyramide工作溶液，随用随配。注意： 20 mL溶液适合200次测试。

 

实验步骤

（该步骤适用于细胞或组织染色）

细胞固定和透化

1.在室温下用3.7％甲醛或低聚甲醛的PBS固定细胞或组织20分钟。

2.用PBS冲洗细胞或组织两次。

3.在室温下用0.1％Triton X-100溶液透化细胞1-5分钟。

4.用PBS冲洗细胞或组织两次。

 

组织固定，脱石蜡和补液

（根据标准IHC方案对组织进行脱蜡和脱水处理。根据实验方案使用特定溶液进行抗原修复。）

 

过氧化物酶标记

1.可选：通过在过氧化物酶淬灭溶液（例如3％过氧化氢）中孵育细胞或组织样品10分钟来淬灭内源性过氧化物酶活性，然后在室温下用PBS冲洗两次。

2.可选：如果使用结合HRP的链霉亲和素，建议通过生物素封闭缓冲液封闭内源性生物素。

3.在4°C下用封闭溶液（例如含1％BSA的PBS）封闭30分钟。

4.除去封闭溶液，并添加稀释好的一抗，在室温下放置60分钟或在4°C下放置过夜。

5.用PBS洗涤3次，每次5分钟。

6.将100 µL二级抗体-HRP工作溶液添加到每个样品中，并在室温下孵育60分钟。注意：孵育时间和浓度可以根据信号强度而变化。

7.用PBS洗涤3次，每次5分钟。

 

酪胺标记

1.准备并向每个样品中加入100 µL的Tyramide工作溶液，并在室温下孵育5-10分钟。 注意：如果观察到非特异性信号，则可以缩短与Tyramide的孵育时间。您应该在不同的孵育时间点使用阳性和阴性对照样品优化孵育时间。或者您可以在工作溶液中使用较低浓度的酪胺。

2.用PBS冲洗3次。

 

复染和荧光成像

1.根据需要对细胞或组织样本进行复染。AAT提供了一系列核复染色试剂，如表1所示。请按照试剂附带的说明进行操作。

2.加上盖玻片。

3.使用适当的滤波器观察Tyramide的荧光信号。

表1.建议用于核复染色的产品。 

货号 产品名称 Ex/Em(nm)
17548 核蓝 DCS1 350/461
17550 核绿 DCS1 503/526
17551 核橙 DCS1 528/576
17552 核红 DCS1 642/660

说明书
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AF546 酪胺 货号11075-AAT Bioquest荧光染料

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AF546 酪胺

AF546 酪胺

货号 11075 存储条件 在零下15度以下保存, 避免光照
规格 200 slides 价格 2604
Ex (nm) 561 Em (nm) 572
分子量 1282.88 溶剂 DMSO
产品详细介绍

简要概述

对于许多免疫组织化学（IHC）应用，传统的酶促扩增程序足以实现足够的抗原检测。但是，有几个因素限制了这些过程的敏感性和实用性。酪酰胺信号放大（TSA）已被证明是一种特别通用且功能强大的酶放大技术，具有更高的测定灵敏度。 TSA基于HRP在低浓度过氧化氢存在下将标记的含酪胺底物转化为可与HRP或附近的酪氨酸残基共价结合的氧化的高反应性自由基的能力。为了实现最大程度的IHC检测，酪胺预先标记有荧光团。通过每个过氧化物酶标记的多个酪酰胺底物的更新而产生的信号放大可转化为低丰度靶标的超灵敏检测以及使用更少量的抗体和杂交探针。在免疫组织化学应用中，源自TSA方法的灵敏度增强功能可以增加一抗稀释度以减少非特异性背景信号，并可以克服由次优固定程序或目标表达水平低引起的弱免疫标记。 AF546酪酰胺包含明亮的AlexaFluor®546，可使用标准TRITC滤波片（AlexaFluor®是ThermoFisher的商标）轻松检测出。金畔生物是AAT Bioquest的中国代理商，为您提供最优质的AF546 酪胺。

点击查看光谱

 

适用仪器

荧光显微镜  
激发： Cy3/TRITC滤波片组
发射： Cy3/TRITC滤波片组
推荐孔板： 黑色透明
滤波片： Cy3/TRITC滤波片组

产品说明书

样品实验方案

简要概述

  1. 修复/透化/阻断细胞或组织
  2. 在封闭缓冲液中添加一抗
  3. 添加结合HRP的二抗
  4. 准备酪酰胺工作溶液，并在室温下在细胞或组织中涂抹5-10分钟

 

溶液配制

储备溶液配制

酪胺储备溶液（200X）：向小瓶中加入100 µL DMSO，并充分混合。 注意：未使用的酪胺储备溶液可在2-8℃下储存。

 

工作溶液配制

酪胺工作溶液（1倍）：将100 µL的酪胺储备溶液添加到包含0.003％H2O2的20 mL缓冲液中。注意：可以使用pH = 7.4的Tris Buffer以获得最佳性能。注意：应立即使用酪胺工作溶液。 注意：20 mL溶液适合200次测试。

 

实验步骤

（该步骤适用于细胞或组织染色）

细胞固定和透化

1.在室温下用3.7％甲醛或低聚甲醛的PBS固定细胞或组织20分钟。

2.用PBS冲洗细胞或组织两次。

3.在室温下用0.1％Triton X-100溶液透化细胞1-5分钟。

4.用PBS冲洗细胞或组织两次。

 

组织固定，脱石蜡和补液

（根据标准IHC方案对组织进行脱蜡和脱水处理。根据实验方案使用特定溶液进行抗原修复。）

 

过氧化物酶标记

1.可选：通过在过氧化物酶淬灭溶液（例如3％过氧化氢）中孵育细胞或组织样品10分钟来淬灭内源性过氧化物酶活性，然后在室温下用PBS冲洗两次。

2.可选：如果使用结合HRP的链霉亲和素，建议通过生物素封闭缓冲液封闭内源性生物素。

3.在4°C下用封闭溶液（例如含1％BSA的PBS）封闭30分钟。

4.除去封闭溶液，并添加稀释好的一抗，在室温下放置60分钟或在4°C下放置过夜。

5.用PBS洗涤3次，每次5分钟。

6.将100 µL二级抗体-HRP工作溶液添加到每个样品中，并在室温下孵育60分钟。注意：孵育时间和浓度可以根据信号强度而变化。

7.用PBS洗涤3次，每次5分钟。

 

Styramide标记

1.向每个样品中添加100 µL Styramide 工作溶液，并在室温下孵育5-10分钟。 注意：如果您观察到非特异性信号，则可以缩短Styramide的孵育时间。您应该在不同的孵育时间点使用阳性和阴性对照确定样品的最佳孵育时间，或者您可以在工作溶液中使用较低浓度的Styramide。

2.用PBS冲洗3次。

 

复染和荧光成像

1.根据需要对细胞或组织样本进行复染。AAT提供了一系列核复染色试剂，如表1所示。请按照试剂附带的说明进行操作。

2.加上盖玻片。

3.使用适当的滤波器观察Styramide的荧光信号。

表1.建议用于核复染色的产品。 

货号 产品名称 Ex/Em(nm)
17548 核蓝 DCS1 350/461
17550 核绿 DCS1 503/526
17551 核橙 DCS1 528/576
17552 核红 DCS1 642/660

  

参考文献

Enhanced detection of Porcine reproductive and respiratory syndrome virus in fixed tissues by in situ hybridization following tyramide signal amplification
Authors: Trang NT, Hirai T, Ngan PH, Lan NT, Fuke N, Toyama K, Yamamoto T, Yamaguchi R.
Journal: J Vet Diagn Invest (2015): 326

Tyramide Signal Amplification for Immunofluorescent Enhancement
Authors: Faget L, Hnasko TS.
Journal: Methods Mol Biol (2015): 161

KSHV cell attachment sites revealed by ultra sensitive tyramide signal amplification (TSA) localize to membrane microdomains that are up-regulated on mitotic cells
Authors: Garrigues HJ, Rubinchikova YE, Rose TM.
Journal: Virology (2014): 75

Multiplexed immunohistochemistry, imaging, and quantitation: a review, with an assessment of Tyramide signal amplification, multispectral imaging and multiplex analysis
Authors: Stack EC, Wang C, Roman KA, Hoyt CC.
Journal: Methods (2014): 46

Rapid and sensitive detection of Escherichia coli O157:H7 in milk and ground beef using magnetic bead-based immunoassay coupled with tyramide signal amplification
Authors: Aydin M, Herzig GP, Jeong KC, Dunigan S, Shah P, Ahn S.
Journal: J Food Prot (2014): 100

Sensitive whole-mount fluorescent in situ hybridization in zebrafish using enhanced tyramide signal amplification
Authors: Lauter G, Soll I, Hauptmann G.
Journal: Methods Mol Biol (2014): 175

Characterization of GABAergic neurons in the mouse lateral septum: a double fluorescence in situ hybridization and immunohistochemical study using tyramide signal amplification
Authors: Zhao C, Eisinger B, Gammie SC.
Journal: PLoS One (2013): e73750

Quantification of alpha-tubulin isotypes by sandwich ELISA with signal amplification through biotinyl-tyramide or immuno-PCR
Authors: Draberova E, Stegurova L, Sulimenko V, Hajkova Z, Draber P.
Journal: J Immunol Methods (2013): 63

Development of a near-infrared fluorescence ELISA method using tyramide signal amplification
Authors: Gong H, Cradduck M, Cheung L, Olive DM.
Journal: Anal Biochem (2012): 27

Integrated tyramide and polymerization-assisted signal amplification for a highly-sensitive immunoassay
Authors: Yuan L, Xu L, Liu S.
Journal: Anal Chem (2012): 10737

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Cy3 酪胺 货号11065-AAT Bioquest荧光染料

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Cy3 酪胺

Cy3 酪胺

Cy3 酪胺 货号11065 货号 11065 存储条件 在零下15度以下保存, 避免光照
规格 1 mg 价格 1272
Ex (nm) 555 Em (nm) 569
分子量 863.96 溶剂 DMSO
产品详细介绍

简要概述

产品基本信息

货号：11065

产品名称：Cy3 酪胺

规格：1mg

储存条件：-15℃避光防潮

保质期：12个月

 

产品物理化学光谱特性

分子量：863.96

外观：固体

溶剂：DMSO

激发波长(nm)：555

发射波长(nm)：565

 

适用仪器

荧光显微镜  
激发： Cy3/TRITC滤波片组
发射： Cy3/TRITC滤波片组
推荐孔板： 黑色透明

 

产品介绍

Cy3 酪胺是美国AAT Bioquest生产的花菁染料，对于许多免疫组织化学（IHC）应用，传统的酶促扩增程序足以实现足够的抗原检测。但是，有几个因素限制了这些程序的敏感性和实用性。事实证明，酪胺信号放大（TSA）是一种特别通用且功能强大的酶扩增技术，具有更高的检测灵敏度。 TSA基于HRP在低浓度过氧化氢存在下将含有标记酪胺的底物转化为氧化的高反应性自由基的能力，该自由基可与HRP处或附近的酪氨酸残基共价结合。为了实现最大的IHC检测，酪胺用荧光团预标记。每个过氧化物酶标记物的多个酪胺底物的转换所赋予的信号放大转化了对低丰度靶标的超灵敏检测以及使用较少量的抗体和杂交探针。在免疫组织化学应用中，源自TSA方法的灵敏度增强允许增加一抗稀释以减少非特异性背景信号，并且可以克服由次优固定程序或低水平靶表达引起的弱免疫标记。 Cy3酪胺含有明亮的Cy3，可以使用标准Cy3过滤器组轻松检测。金畔生物是AAT Bioquest的中国代理商，为您提供最优质的Cy3 酪胺检测试剂。 

点击查看光谱

 

参考文献

Enhanced detection of Porcine reproductive and respiratory syndrome virus in fixed tissues by in situ hybridization following tyramide signal amplification
Authors: Trang NT, Hirai T, Ngan PH, Lan NT, Fuke N, Toyama K, Yamamoto T, Yamaguchi R.
Journal: J Vet Diagn Invest (2015): 326

Tyramide Signal Amplification for Immunofluorescent Enhancement
Authors: Faget L, Hnasko TS.
Journal: Methods Mol Biol (2015): 161

KSHV cell attachment sites revealed by ultra sensitive tyramide signal amplification (TSA) localize to membrane microdomains that are up-regulated on mitotic cells
Authors: Garrigues HJ, Rubinchikova YE, Rose TM.
Journal: Virology (2014): 75

Multiplexed immunohistochemistry, imaging, and quantitation: a review, with an assessment of Tyramide signal amplification, multispectral imaging and multiplex analysis
Authors: Stack EC, Wang C, Roman KA, Hoyt CC.
Journal: Methods (2014): 46

Rapid and sensitive detection of Escherichia coli O157:H7 in milk and ground beef using magnetic bead-based immunoassay coupled with tyramide signal amplification
Authors: Aydin M, Herzig GP, Jeong KC, Dunigan S, Shah P, Ahn S.
Journal: J Food Prot (2014): 100

Sensitive whole-mount fluorescent in situ hybridization in zebrafish using enhanced tyramide signal amplification
Authors: Lauter G, Soll I, Hauptmann G.
Journal: Methods Mol Biol (2014): 175

Characterization of GABAergic neurons in the mouse lateral septum: a double fluorescence in situ hybridization and immunohistochemical study using tyramide signal amplification
Authors: Zhao C, Eisinger B, Gammie SC.
Journal: PLoS One (2013): e73750

Quantification of alpha-tubulin isotypes by sandwich ELISA with signal amplification through biotinyl-tyramide or immuno-PCR
Authors: Draberova E, Stegurova L, Sulimenko V, Hajkova Z, Draber P.
Journal: J Immunol Methods (2013): 63

Development of a near-infrared fluorescence ELISA method using tyramide signal amplification
Authors: Gong H, Cradduck M, Cheung L, Olive DM.
Journal: Anal Biochem (2012): 27

Integrated tyramide and polymerization-assisted signal amplification for a highly-sensitive immunoassay
Authors: Yuan L, Xu L, Liu S.
Journal: Anal Chem (2012): 10737

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生物素-PEG4-酪胺 货号45352-AAT Bioquest荧光染料

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生物素-PEG4-酪胺

生物素-PEG4-酪胺

生物素-PEG4-酪胺 货号45352 货号 45352 存储条件 在零下15度以下保存, 避免光照
规格 200 Slides 价格 1200
Ex (nm) Em (nm)
分子量 610.77 溶剂 DMSO
产品详细介绍

简要概述

产品基本信息

货号：45352

产品名称：生物素-PEG4-酪胺

规格：200 Slides

储存条件：-15℃避光防潮

保质期：12个月

 

产品物理化学光谱特性

分子量：610.77

溶剂：DMSO

 

产品介绍

生物素-PEG4-酪胺是一种通过催化报告分子沉积（CARD）用于酪胺信号放大（TSA）的试剂。在CARD中，报告酶，例如与二级抗体结合的辣根过氧化物酶（HRP），与目标结合并催化生物素酪胺共价沉积到样品上。然后用检测（如链霉亲和素HRP）样品，允许通过显色或荧光方法进行检测。生物素-PEG4-酪胺已被用于免疫组织化学、ELISA、Western blot和原位杂交应用。在大多数生物检测中，它往往比生物素酪胺具有更好的信号/背景。金畔生物是AAT Bioquest的中国代理商，为您提供最优质的生物素-PEG4-酪胺。

 

参考文献

High specificity and tight spatial restriction of self-biotinylation by DNA and RNA G-Quadruplexes complexed in vitro and in vivo with Heme.
Authors: Lat, Prince Kumar and Liu, Kun and Kumar, Dev N and Wong, Kenneth K L and Verheyen, Esther M and Sen, Dipankar
Journal: Nucleic acids research (2020)

APEX Peroxidase-Catalyzed Proximity Labeling and Multiplexed Quantitative Proteomics.
Authors: Kalocsay, Marian
Journal: Methods in molecular biology (Clifton, N.J.) (2019): 41-55

Biotinylation and isolation of an RNA G-quadruplex based on its peroxidase-mimicking activity.
Authors: Li, Wei and Zeng, Weiwu and Chen, Yi and Wang, Fang and Wu, Fan and Weng, Xiaocheng and Zhou, Xiang
Journal: The Analyst (2019): 4472-4476

Proximity labeling of cis-ligands of CD22/Siglec-2 reveals stepwise α2,6 sialic acid-dependent and -independent interactions.
Authors: Alborzian Deh Sheikh, Amin and Akatsu, Chizuru and Imamura, Akihiro and Abdu-Allah, Hajjaj H M and Takematsu, Hiromu and Ando, Hiromune and Ishida, Hideharu and Tsubata, Takeshi
Journal: Biochemical and biophysical research communications (2018): 854-859

Identification of Siglec Ligands Using a Proximity Labeling Method.
Authors: Chang, Lanyi and Chen, Yi-Ju and Fan, Chan-Yo and Tang, Chin-Ju and Chen, Yi-Hsiu and Low, Penk-Yeir and Ventura, Albert and Lin, Chun-Cheng and Chen, Yu-Ju and Angata, Takashi
Journal: Journal of proteome research (2017): 3929-3941

Tyramide Signal Amplification Permits Immunohistochemical Analyses of Androgen Receptors in the Rat Prefrontal Cortex.
Authors: Low, Katelyn L and Ma, Chunqi and Soma, Kiran K
Journal: The journal of histochemistry and cytochemistry : official journal of the Histochemistry Society (2017): 295-308

Immunohistochemical Methods for Measuring Tissue Lymphangiogenesis.
Authors: Royston, Daniel J and Clasper, Steven and Jackson, David G
Journal: Methods in molecular biology (Clifton, N.J.) (2016): 35-48

Development of a highly sensitive immunohistochemical method to detect neurochemical molecules in formalin-fixed and paraffin-embedded tissues from autopsied human brains.
Authors: Goto, Satoshi and Morigaki, Ryoma and Okita, Shinya and Nagahiro, Shinji and Kaji, Ryuji
Journal: Frontiers in neuroanatomy (2015): 22

Development of a sensitive ELISA for quantification of three- and four-repeat tau isoforms in tauopathies.
Authors: Luk, Connie and Giovannoni, Gavin and Williams, David R and Lees, Andrew J and de Silva, Rohan
Journal: Journal of neuroscience methods (2009): 34-42

Levels of pregnancy-associated plasma protein A in patients with coronary artery disease.
Authors: Liu, Zhi-Yuan and Zhang, Jin-Ying and Sun, Tong-Wen and Zhang, Yan-Jun and Zhang, Li and Wang, Le-Xin
Journal: Clinical and investigative medicine. Medecine clinique et experimentale (2008): E85-9

说明书
生物素-PEG4-酪胺.pdf